• Виктория

Иммунометаболические особенности формирования поствакцинального иммунитета против ЦВС-2 у свиноматок

Общий метаболический статус организма свиней взаимосвязан с функциями иммунной системы. Так, метаболизм влияет на дифференцировку и активность врожденных и адаптивных иммунных клеток, а иммунная система, наоборот, обеспечивает возможность формирования физиологически обусловленного метаболизма и энергопотребления клетками органов и тканей в стандартизированных условиях окружающей среды. Поэтому общий биоэнергетический статус организма животных является результатом согласованного функционирования метаболических потоков и иммунологических реакций.

Вопросы взаимосвязи метаболического и иммунного статуса особо актуальны у сельскохозяйственных животных в условиях промышленной эксплуатации. Исключением не являются и свиноматки, у которых сохранение иммунометаболического баланса служит основой для поддержания репродуктивного здоровья и позволяет получать «качественное и жизнеспособное» потомство, определяя эффективность свиноводства.

В ходе репродуктивного цикла физиологический статус свиноматок претерпевает ряд последовательных перестроек, сопряженных с чередованием беременности, родов, лактации и периода для осеменения, что отражается на изменчивости метаболизма и иммунитета.

Согласно данным, метаболические изменения в организме свиноматок, особенно в период беременности и лактации, коррелируют со сдвигами в их иммунном статусе, включая уровень циркулирующих противовоспалительных цитокининов. В исследованиях отмечено, что в организме беременных и лактирующих свиноматок происходят очень существенные изменения в иммунобиологическом статусе. Во время супоросности это может приводить к абортам, задержке внутриутробного развития плодов, лактации, к снижению молочной продуктивности и биологической ценности молока, напрямую влияя на рост и развитие поросят. Поэтому в условиях высокоинтенсивной реализации репродуктивных качеств необходимо максимально снизить уровень воздействия на свиноматок различных экзогенных агентов, в том числе и биологических, создавая основу для формирования «нормального» иммунометаболизма. При этом метаболизм в клетках иммунной системы сопряжен с их функциональной активностью и выраженностью проявления биологических свойств по отношению к определенным антигенным частицам.

В условиях промышленного свиноводства к «факторным инфекциям» относится цирковирусная, течение которой осложняется присоединением различных коинфекций. Циркуляция цирковируса в производственных помещениях влияет на воспроизводительные функции свиноматок. При этом репродуктивная недостаточность животных проявляется в виде увеличения числа абортов и мертворожденных поросят в помете, у мертворожденных и неонатальных плодов регистрируются повреждения сердца, печени и других тканей. Это подтверждает наличие трансплацентарного пути распространения вируса в организме животных, контаминацию тканей яичников, фолликулярной жидкости и ооцитов.

По данным, клетки яйцевода, фолликулярная жидкость и репродуктивный тракт могут быть источниками цирковируса в организме свиноматок. Важно подчеркнуть, что последствия «репродуктивных неудач» определяют уровень экономических потерь свиноводческих предприятий из-за недополучения поголовья поросят, увеличения количества непродуктивных дней в технологическом цикле свиноматок и т. д.

В настоящее время основным методом специфической профилактики и борьбы с цирковирусными заболеваниями у свиней является вакцинация. Для этих целей разработано большое количество вакцин (живые аттенуированные, ДНК-вакцины, векторные, рекомбинантные субъединичные), которые являются самыми продаваемыми в странах с развитым свиноводством.

Эффективность вакцинации в большинстве свиноводческих предприятий принято оценивать по производственным показателям, связанным с рентабельностью. Их величина зависит от степени уменьшения в стаде количества животных, имеющих признаки виремии, как результат выработки после вакцинации «определенного уровня» нейтрализующих антител. Однако в большинстве свиноводческих предприятий текущая вакцинация свиней в стаде против ЦВС-2 не позволяет сформировать «однородный» иммунитет, что определяет поиск путей повышения ее защитной эффективности.

Цель исследования — оценка защитной эффективности текущей вакцинации свиноматок против ЦВС-2 по параметрам иммунометаболического статуса их организма и величине производственных показателей в условиях сочетания введения вакцины с иммунобиологическим препаратом антигенонаправленного действия («Трансфер Фактором»).

Материалы и методы исследования

Протоколы научных экспериментов были согласованы с отделом свиноводства ООО «Агрофирма “Ариант”» (Челябинская обл., Россия). Выполнены на базе товарного свинокомплекса СВК 2 (2022–2024 гг.).

Репродуктивный цикл свиноматок включал следующие технологические периоды: осеменение, беременность, опорос и лактация. Они протекали в условиях цеха осеменения и цеха опороса. Наличие беременности устанавливали методом УЗИ, в цех опороса свиноматок переводили на 111–112-е сутки супоросности.

Для содержания животных использовали индивидуальные клетки, оборудованные автоматическими поилками и кормушками. Питательная ценность комбикормов, использующихся в кормлении животных в зависимости от их физиологического состояния, была сбалансирована по рекомендациям Genesis (Канада).

Планирование экспериментальной части было ориентировано на схему текущей вакцинации свиноматок против ЦВС-2 в условиях свинокомплекса. Она проводилась в период отъема поросят — на 21-сутки после опороса. Для вакцинации свиней использовалась вакцина «Ингельвак ЦиркоФЛЕКС» (Ingelvac CircoFLEX, Германия). Доза и способ введения соответствовали инструкции производителя вакцины.

Для повышения эффективности текущей вакцинации ее сочетали с введением специфического иммунобиостимулятора «Трансфер Фактор», который был получен из лейкоцитарных клеток гипериммунизированных доноров при помощи той же вакцины. Препарат произведен в условиях лаборатории кафедры инфекционных болезней и ветеринарно-санитарной экспертизы ФГБОУ ВО «Южно-Уральский ГАУ», включая и операции по его подготовке к использованию. Иммунобиостимулятор вводился два раза: первый — за 7 суток до вакцинации (14-е сутки после опороса), второй — совместно с вакциной. Доза препарата составила 5,0 мл/гол, способ введения — внутримышечный.

Выполнение работы предусматривало формирование двух опытных групп: первая — контрольная (КГ), состояла из 196 свиноматок, которым применялась используемая на свинокомплексе схема текущей вакцинации против ЦВС-2; вторая — опытная (ОГ), включала 202 головы, вакцинацию против ЦВС-2 сочетали с введением специфического иммунобиостимулятора «Трансфер Фактор» (рис. 1).

В цехе осеменения после вакцинации свиноматок ежедневно в течение недели визуальным методом проверяли на наличие клинических симптомов виремии и побочных реакций.

В контрольные точки эксперимента для оценки иммунометаболического статуса свиноматок контрольной и опытной групп брали кровь из краниальной полой вены с соблюдением правил асептики и антисептики у 10 животных, используя метод случайной выборки (рис. 1). В лабораторных анализах применялась сыворотка крови, полученная общепринятым методом. Все исследования выполнены в первые сутки после взятия крови у животных.

В образцах сыворотки крови определяли:

1. Концентрацию иммуноглобулинов (IgG, IgM). Метод определения — иммунотурбидиметрический. Для этих целей использовали готовые наборы реактивов «Иммуноглобулин G-Витал», «Иммуноглобулин М-Витал», производителем которых являлся АО «Витал Девелопмент Корпорейшн» (Россия). Образцы сыворотки крови, контрольную и калибровочную пробы разводили физиологическим раствором. Температура инкубации проб — 25 °С; длина определения оптической плотности — λ = 340 нм.

2. Уровень показателей, сопряженных с состоянием белкового обмена и желчевыделительной функции печени. Включали общий белок (ОБ, г/л), альбумины (Alb, г/л), мочевину (Мoch, ммоль/л) активность аланинаминотрансферазы (АлАТ, ммоль/л•ч), аспартатаминотрансферазы (АсАТ, ммоль/л•ч) и щелочной фосфатазы (Е/л), общий билирубин (мкмоль/л). Для их определения использовали наборы готовых реагентов «Эко-Сервис», «Абрис» и «Витал» (поставщик «АниМед», Россия), основанные на методе колориметрии. Процедура анализов соответствовала инструкции по их проведению. Дополнительно расчетным путем были определены концентрация глобулинов (Gl, г/л), величина соотношений АсАТ/АлАТ (у. е.), общий белок (мочевина) (ОБ/Мoch, у. е.) и альбумин (мочевина) (Alb/Мoch, у. е.).

3. Концентрация параметров липидного обмена включала: общие липиды (г/л), триглицериды (ммоль/л), холестерин (ммоль/л) и холестерин ЛПНП (ммоль/л). Метод определения — колориметрический. Для выполнения анализов использовались реагенты наборов «Ольвекс диагностикум» («Ольвекс Диагностикум», Россия) и «Витал» («Витал Девелопмент Корпорэйшн», Россия).

Эффективность вакцинации в опытной и контрольной группах была оценена по производственным показателям: количеству выбывших за период эксперимента свиноматок в результате абортов и прохолоста; учету числа родившихся поросят (гол) от свиноматок, в том числе мертворожденных; количеству оприходованных поросят (гол); выходу поросят на один опорос (гол) и их сохранности на опоросе (%).

Данные по экономической эффективности использования препарата «Трансфер Фактор» были представлены специалистами свинокомплекса.

Статистическая обработка данных была направлена на опровержение гипотезы, согласно которой препарат «Трансфер Фактор» не оказывал влияния на эффективность вакцинации. Все цифровые данные были представлены в виде среднего значения ± стандартная ошибка среднего значения. Статистические данные были получены с использованием программного обеспечения Microsoft Excel 2010 (США). Значения вероятности р < 0,05 считались статистически значимыми.

Эксперименты проведены с соблюдением требований, изложенных в Директиве Европейского парламента и Совета Европейского союза 2010/63/ЕС от 22 сентября 2010 года о защите животных, использующихся для научных целей, и принципов обращения с животными согласно статье 4 ФЗ РФ № 498-ФЗ.

Результаты и обсуждение

Во время лактации и беременности иммунобиологический статус матери является залогом будущего здоровья и продуктивности поросят. При этом важную роль играют иммуноглобулины, регулирующие иммунное состояние развивающихся плодов и реакции поросят в период новорожденности. В частности, иммунологический статус свиноматок в период лактации сопряжен с процессом созревания иммунной системы новорожденных и регуляцией ее функций, так как посредством молозива и молока в их организм поступают материнские иммуноглобулины и цитокинины.

В период беременности иммуноглобулины позволяют организму свиноматок контролировать «материнскую инфекцию», снижая ее воспалительное воздействие, что отражается на врожденной реакции и восприимчивости новорожденных к данным инфекционным агентам.

В исследованиях отмечено, что иммунология беременности основана на подавлении иммунитета в организме матери, что обеспечивает развитие плода, но и определяет повышенный риск для развития бактериальной и вирусной инфекции, имеющей пагубные последствия для выживаемости плода. Поэтому по изменчивости в крови свиноматок иммуноглобулинов в период лактации и беременности можно судить о сбалансированности в их организме воспалительных процессов и иммунологических реакций, уровне реакционной способности организма животных в заданных условиях технологической среды, а также определить тип иммунного ответа (первичный, вторичный) на вакцинацию.

При анализе полученных данных ориентировались на опровержение нулевой гипотезы, согласно которой сочетание вакцинации с введением «Трансфер Фактора» не оказало влияния на ее эффективность.

Необходимо отметить, что поствакцинальный период свиноматок, в который происходит выработка вируснейтрализующих антител, сочетался с прекращением лактации, осеменением и беременностью. Данные стадии технологического цикла значимо влияют на эффективность формируемого иммунитета, так как сопровождаются иммунологическими перестройками в организме животных.

В контрольной и опытной группах свиноматок в контрольной точке эксперимента 0 (14-е сутки после опороса) уровень IgG колебался на уровне 4,97 ± 0,16 и 5,44 ± 0,23 г/л (рис. 2), то есть не был статистически различен.

В общей сумме иммуноглобулинов крови лактирующих свиноматок IgG составляли от 73 до 74%. По данным, основной их функцией в организме свиноматок в данный период репродуктивного цикла являлось поддержание определенного уровня IgG в составе молока, так как их основным источником являются иммуноглобулины крови, поступающие в секрет за счет селективного транспорта через альвеолярный эпителий молочной железы.

Вакцинация свиноматок, как уже было отмечено, осуществлялась в конце лактации и совпадала с отъемом поросят, определяя резкие сдвиги в состоянии иммунитета. При этом для выработки поствакцинальных нейтрализующих антител против цирковируса в необходимом количестве необходима стимуляция функциональной активности В-лимфоцитов, а для развития беременности, наоборот, снижение иммунологической реактивности организма матери к антигенам плода. Это достигается путем выработки ряда иммуносупрессивных соединений (стероидные гормоны, специфические белки плаценты). Совокупность данных факторов влияла на характер иммунного ответа организма свиноматок в поствакцинальный период.

Так, в контрольной точке эксперимента 2 (57–59-е сутки беременности) в крови свиноматок контрольной и опытной групп увеличивалась концентрация IgG до 7,15 ± 0,40 и 10,51 ± 0,27 г/л (рис. 2), превышая уровень лактирующих животных в 1,43 и 1,93 раза (р < 0,05). Межгрупповые различия составляли 46,99% (р < 0,05). При этом доля IgG в общей сумме иммуноглобулинов крови у свиноматок контрольной группы составляла 66,51%, а опытной — 82,56%.

Как известно, IgG участвуют в поддержании иммунологической памяти, влияя на активность системы комплемента, фагоцитарные свойства нейтрофилов и макрофагов, а при беременности — в формировании пассивного иммунитета у развивающихся плодов. Следовательно, увеличение IgG в крови свиноматок в середине супоросности и после текущей вакцинации отражало степень проявления механизмов вторичного иммунного ответа. Они обеспечивали, во-первых, лизис антигенных частиц, в том числе и развивающихся плодов, а во-вторых — выработку дополнительного количества поствакцинальных нейтрализующих антител, что типично для ревакцинации.

Более выраженный прирост числа IgG в крови животных в условиях сочетания вакцинации с введением «Трансфер Фактора» объясняется тем, что препарат содержит цитокины, которые способны действовать как иммуномодуляторы, усиливая активность макрофагов, увеличивая локальные уровни антител, индуцируя выработку интерферона и активируя клетки-киллеры.

В контрольной точке эксперимента 3 (в конце беременности — до перевода в секцию опороса) количество IgG в крови свиноматок снижалось (рис. 2), что специфично для данного срока беременности и обусловлено переходом иммуноглобулинов через плаценту к плодам. Однако различия между контрольной и опытной группами составляли 1,56 раза (р < 0,05). Это отражало способность «Трансфер Фактора» поддерживать активность иммунного ответа в организме животных, определяя степень проявления защитных функций иммунной системой.

О правомерности данного вывода свидетельствовал тот факт, что в крови свиноматок контрольной группы доля IgG в общей сумме защитных белков составила 57,78%, а опытной — 81,76%.

Следовательно, введение в схему вакцинации «Трансфер Фактора» статистически значимо влияло на уровень IgG в крови свиноматок в поствакцинальный период, определяя развитие иммунного ответа преимущественно по вторичному механизму за счет выработки необходимого количества антигенспецифических вируснейтрализующих антител.

В качестве доказательной базы сделанного вывода проанализировали изменчивость в крови свиноматок иммуноглобулинов IgМ, которые образуются в результате контакта плазматических клеток с различными чужеродными антигенами и характеризуют процесс развития первичного иммунного ответа. В контрольной точке эксперимента 0 они составляли у свиноматок контрольной и опытной групп 24,18–24,39% от общего пула иммуноглобулинов в крови, или 1,63 0,09–1,81±0,15 г/л (рис. 3), отражая уровень общей «первичной» антигенной нагрузки на их организм в существующих технологических условиях.

В крови свиноматок контрольной группы в контрольных точках эксперимента 2 и 3 концентрация IgМ увеличивалась (рис. 3), превышая уровень лактирующих животных в 1,98–2,02 раза (р <0,05) и составляя в общем пуле иммуноглобулинов 30,70–38,41%, что свидетельствовало о возрастании доли иммунологических процессов, протекающих по механизму первичного иммунного ответа в исследуемой популяции свиней. В то же время в опытной группе наблюдалась противоположная тенденция. Уровень IgМ статистически значимо не изменялся, но имел тенденцию к снижению. При этом межгрупповые различия составили 1,63–2,11 раза (р < 0,05).

Таким образом, в популяции свиноматок контрольной группы поствакцинальный иммунитет формировался в условиях прироста количества механизмов первичного иммунного ответа, в опытной группе — приоритетно обеспечивался за счет механизмов вторичного иммунного ответа, определяющих продуцирование опсонизирующих и вируснейтрализующих антител.

В качестве одного из критериев эффективности вакцинации были использованы метаболический статус свиноматок и его изменчивость в поствакцинальный период. По данным, он определяет защитно-компенсаторный потенциал организма животных. В роли метаболических индикаторов оценивали показатели крови, которые характеризуют активность и направленность обменных процессов в организме животных. Во-первых, охарактеризовали изменчивость белкового метаболизма в ходе репродуктивного цикла свиноматок с учетом беременности и вакцинации против ЦВС 2. В качестве фоновой точки использовались показатели крови, соответствующие периоду лактации (контрольная точка эксперимента — 0).

При анализе данных учитывали тот факт, что белковый метаболизм преимущественно ориентирован на катаболизм, что сопряжено со вскармливанием свиноматками большого помета в условиях «физиологически обусловленного» несоответствия потребления корма потребностям организма в энергии и питательных веществах. В контрольной точке эксперимента 0 биохимический состав крови смвиноматок контрольной и опытной групп не имел статистически значимых различий. В частности, уровень общего белка и мочевины колебался в пределах верхних границ нормы, свидетельствуя о мобилизации белковых ресурсов в их организме и активном использовании белковых молекул в качестве субстратов катаболизма. При этом ограничивалась скорость анаболизма альбуминов и интенсивность альбуминсинтезирующей функции печени, так как их уровень поддерживался в крови свиней только на нижней границе нормы.

Способность свиноматок в период лактации активно мобилизовать тканевые белковые ресурсы для поддержания оптимального «производства молока» определяется тем, что современные породы свиней легко теряют и набирают мышечную массу, изменяя свою упитанность. У них уже генетически обусловлена сопряженность производства молочного белка в ходе лактации со скоростью мобилизации скелетных мышц. При этом эта особенность метаболического состояния свиноматок не зависит от уровня их кормления.

Хотелось бы отметить, что в период лактации в крови свиноматок контрольной и опытной групп увеличивалась активность фермента АлАТ, превышая верхнюю границу нормы на 15,83–20,83% (табл. 1). Следовательно, в схеме катаболизма белков крови формировался маршрут, начинающийся с общего белка и альбуминов и являющийся зоной приложения активности аланинаминотрансферазы, посредством которой углеродные остатки свободных аминокислот включались в глюкозоаланиновый шунт, а аммиак утилизировался через синтез мочевины. При этом со стороны гепатоцитов была выражена «цитолитическая реакция».

В поствакцинальный период белковый метаболизм приоритетно был ориентирован на удовлетворение потребностей организма матери и развивающихся плодов. При этом в популяции свиноматок опытной и контрольной групп выявлялись общие сдвиги в показателях крови, которые имели адаптивный характер и были направлены на создание условий для прогрессирования беременности. Так, уменьшалась концентрация общего белка за счет альбуминов. По данным, это является следствием появления дополнительного круга кровообращения в организме матери и способности белков регулировать онкотическое давление крови. Кроме этого, снижался уровень мочевины, свидетельствуя о задержке белкового азота в организме свиноматок. При этом увеличивалась скорость оборота белков в схеме метаболизма «общий белок — мочевина» и «альбумины — мочевина», а также возрастала скорость переаминирования свободных аминокислот и усиливалась желчевыделительная функция печени.

Совокупность показателей крови характеризуют уровень интеграции белкового и азотистого обмена в организме беременных свиноматок и возможности поддержания потребностей плодов в белке за счет изменений в метаболизме аминокислот, синтезе мочевины и использовании остатков аминокислот в цикле Кребса и глюконеогенезе.

Несмотря на общие закономерности формирования белкового метаболизма в организме свиноматок в поствакцинальный период, были выявлены некоторые отличия между животными контрольной и опытной групп (табл. 1). Так, в условиях сочетания вакцинации с введением «Трансфер Фактора» убыль количества общего белка и альбуминов в крови животных была менее существенна и составляла 1,70–2,34% и 3,59–5,80% соответственно (в контроле — 7,73–9,96% и 3,90–7,65%), что отразилось на концентрации глобулинов.

В крови «контрольных»  свиноматок уровень глобулинов уменьшился на 11,92–12,42% (р < 0,05). В то же время у «опытных» увеличивался до 1,51% (хоть и недостоверно), но межгрупповые различия по концентрации мочевины, скорости оборота белка в схеме метаболизма «общий белок — мочевина» и «альбумины — мочевина» составили от 11,89 до 23,31%. При этом свиноматки опытной группы проявили более высокую склонность к «задержке» белкового азота в своем организме.

Белковый метаболизм сопряжен с активностью ферментов переаминирования, определяющих специфику использования аминокислот после дезаминирования. Хотя активность трансаминаз в поствакцинальный период возрастала в крови свиноматок (табл. 1), но у животных контрольной группы было выявлено превышение границ нормы для активности АлАТ (на 30,00–35,00%) и ее преобладание над уровнем АсАТ (АсАТ/АлАТ — 0,54 у. е.). В крови свиноматок опытной популяции уровень ферментов соответствовал нормативным границам. При этом активность АсАТ доминировала над АлАТ (АсАТ/АлАТ — 2,58–2,73 у. е.). Следовательно, аминотрансферазный профиль крови животных определял приоритетный путь утилизации углеродных остатков аминокислот в их организме. В контрольной группе он был анаболическим — глюконеогенез, а в опытной — катаболическим (посредством цикла Кребса). При этом у животных контрольной группы сохранялась «цитолитическая реакция» со стороны гепатоцитов.

В поствакцинальный период, как уже было отмечено, усиливалась холестатическая функция печени (маркеры — щелочная фосфатаза, общий билирубин). При этом в контроле концентрация общего билирубина превышала границы нормы на 3,09–8,68%, а в опыте соответствовала диапазону нормативных значений (табл. 1).

Таким образом, при анализе показателей белкового метаболизма и сопряженной с ним холестатической функции печени не была доказана гипотеза, согласно которой препарат «Трансфер Фактор» не оказывал влияния на биологический статус свиноматок в поствакцинальный период. Во-вторых, при оценке метаболического статуса свиноматок в поствакцинальный период был проанализирован липидный спектр крови в ходе репродуктивного цикла.

При его анализе учитывали, что липидный обмен у свиней обеспечивает до 50% потребностей в метаболической энергии за счет высокой склонности их организма накапливать значительные запасы жира. При этом свиноматки современных пород в период лактации легко мобилизуют не только белковые, но и липидные ресурсы, использующиеся в производстве молока с питательностью, обеспечивающей потребности быстрорастущего помета. Фоновые показатели крови, выявленные в контрольной точке эксперимента 0 и соответствующие 14-м суткам лактации, не имели статистически значимых различий у свиноматок контрольной и опытной групп (табл. 2).

При этом уровень общих липидов был меньше границы нормы (на 8,00–12,28%), а триглицеридов и холестерина — соответствовал ее нижнему пределу, отражая скорость использования запасов жировых депо в энергетических и синтетических процессах в организме лактирующих свиноматок.

По данным, липидный метаболизм к концу периода лактации ориентирован не только на производство молока, но и на сохранение жировых запасов для будущего репродуктивного цикла.

Поствакцинальный период у свиноматок контрольной и опытной групп совпадал с самым критическим периодом репродуктивного цикла — беременностью, в который основные энергозатраты организма определялись потребностями развивающихся плодов. Однако липидный спектр крови животных имел значительные межгрупповые различия. У опытных свиноматок в ходе беременности увеличивалось количество общих липидов (на 23,78–37,45%), триглицеридов (на 41,07–64,28%), общего холестерина (на 12,25–14,71%) в условиях сохранения концентрации холестерина ЛПНП. При этом все параметры соответствовали границам нормы, то есть липидный метаболизм был физиологически обусловленным и создавал основу для благоприятного исхода беременности.

По данным, выявленная совокупность липидных параметров у опытных свиноматок была результатом способности их организма в период беременности создавать запас «материнского жира», который является источником энергии для развивающихся плодов и может «буферизировать» краткосрочные или среднесрочные изменения в энергоснабжении.

Логично предположить, что немаловажную роль в формировании направленности изменений в материнском организме играла эффективность вакцинации против ЦВС 2.

В то же время у свиноматок контрольной группы в период беременности отмечалось уменьшение концентрации общих липидов (на 25,46–33,22%), общего холестерина (на 10,04–18,34%) на фоне прироста количества холестерина ЛПНП (на 17,46–34,92%) и триглицеридов (на 20,72–33,96%), то есть липидный обмен претерпевал изменения, направленные на увеличение скорости использования резервных жиров и их окисления, что, соответственно, отражалось на эффективности вакцинации и исходе беременности.

Следовательно, при анализе липидного спектра крови гипотеза, согласно которой препарат «Трансфер Фактор» не оказывал влияния на метаболическое состояние свиноматок в поствакцинальный период, не получила подтверждения.

Для оценки эффективности вакцинации в опытной и контрольной группах использовали и производственные показатели (рис. 4), из которых были проанализированы межгрупповые различия по количеству выбывших за период эксперимента свиноматок (абортированные, прохолостившиеся), по числу родившихся, мертворожденных и оприходованных поросят, по выходу поросят на один опорос и их сохранности на опоросе.

По данным, показатели экономически значимы и зависят от количества вируснейтрализующих антител, циркулирующих в организме свиноматок после вакцинации. Их анализ позволил проверить первоначально сформулированную гипотезу о том, что включение «Трансфер Фактора» в схему вакцинации не влияет на ее эффективность.

Было уже отмечено, что общее количество свиноматок в контрольной (КГ) и опытной (ОГ) группах составило 196 и 202 головы. За период эксперимента из поголовья свиноматок выбыли, соответственно, 38 и 30 голов, что позволило получить поросят от 160 и 172 животных. Общее количество поросят, которые родились у свиноматок контрольной и опытной групп, — 2228 и 2377 голов соответственно (рис. 4). При этом в КГ из общего числа родившихся поросят 228 были мертворожденными, а в ОГ — только 141.

Межгрупповые различия по данному показателю были равны 38,15%. Соответственно, это отразилось на количестве оприходованных поросят (в контрольной группе 2000 гол., в опытной — 2236 гол.).

С учетом вышеприведенных производственных показателей был рассчитан выход поросят на один опорос, который составил в КГ 12,5 головы, а в опытной — 13. Межгрупповые различия в сохранности поросят на опоросе были равны 0,80% (рис. 4). Следовательно, при проверке гипотезы работы по производственным показателям были выявлены различия между опытной и контрольной группами, свидетельствуя о способности «Трансфер Фактора», включенного в схему вакцинации, влиять на иммунометаболический статус свиноматок и эффективность поствакцинального иммунитета.

Подводя итог работы, попытались составить схему положительного действия «Трансфер Фактора» на иммунометаболический статус «опытных» свиноматок и их производственные показатели при его использовании в схеме вакцинации против ЦВС-2 (рис. 5). Так, «Трансфер Фактор», выделенный из лейкоцитов гипериммунизированных животных, содержит провоспалительные цитокинины, поэтому его включение в схему вакцинации против ЦВС-2 в поствакцинальный период способствует активации механизмов вторичного и ограничению первичного иммунного ответа, определяя увеличение в крови IgG и снижение IgM. Это содействует выработке поствакцинальных нейтрализующих антител против цирковируса в необходимом количестве, а также формированию пассивного иммунитета у развивающихся плодов.

«Трансфер Фактор» в организме привитых свиноматок проявил гепатопротекторное действие, способствуя задержке белкового азота в их организме и созданию резервных запасов жира, нормализуя поток аминокислот в реакции переаминирования и формируя интенсивность желчевыделительной функции печени, стабилизируя клеточные мембраны гепатоцитов. Это позволяло организму свиноматок экономично использовать пластические и энергетические ресурсы, формируя адекватное состояние репродуктивных функций и обеспечивая более высокую выживаемость плодов и новорожденных поросят.

Выводы

В совокупности исследования показывают, что введение в схему вакцинации свиноматок против ЦВС-2 «Трансфер Фактора», полученного из лейкоцитов гипериммунизированных животных, влияет на иммунометаболизм в организме животных, формируя иммунометаболический профиль, способствующий выработке вируснейтрализующих антител в необходимом количестве, что отражается на эффективности поствакцинального иммунитета и величине производственных и экономически важных показателей.

В ходе формирования поствакцинального иммунитета приоритетна роль механизмов вторичного иммунного ответа, о чем свидетельствует увеличение концентрации IgG в 1,46–1,55 раза и уменьшение IgМ в 1,63–2,11 раза по сравнению с контролем.

«Трансфер Фактор», обладая гепатопротекторными свойствами, изменяет функциональную способность клеток печени и стабилизирует состояние их мембранных структур. Это позволяет ориентировать белковый и липидный метаболизм в организме свиноматок в анаболическом направлении, способствуя задержке белкового азота и накоплению резервных жиров в организме животных, использованию углеродных остатков аминокислот посредством регуляции активности ферментов переаминирования (АлАТ, АсАТ) преимущественно в реакциях цикла Кребса, контролю желчегонной способности гепатоцитов и объемов синтезируемого холестерина, включая его количество в составе ЛПНП.

Коррекция иммунометаболического статуса свиноматок в поствакцинальный период позволяет (по сравнению с контролем) снизить выбытие свиноматок из популяции свинокомплекса на 21,05%, мертворожденность поросят на 38,15%, увеличив число оприходованных на 10,55%, выход поросят на один опорос с 12,5 голов до 13 и повысив сохранность поросят на опоросе на 0,80%.

Об авторах

Павел Валерьевич Бурков1; руководитель научно-исследовательского центра биотехнологии репродукции животных,кандидат ветеринарных наук

burcovpavel@mail.ru; https://orcid.org/0000-0001-7515-5670

Максим Борисович Ребезов2, 3

-главный научный сотрудник, доктор сельскохозяйственных наук, кандидат ветеринарных наук, профессор 2;

-профессор кафедры биотехнологии и пищевых продуктов, доктор сельскохозяйственных наук, кандидат ветеринарных наук3

rebezov@ya.ru; https://orcid.org/0000-0003-0857-5143

Марина Аркадьевна Дерхо1; заведующая кафедрой естественно-научных дисциплин, доктор биологических наук

derkho2010@yandex.ru; https://orcid.org/0000-0003-3818-0556

Павел Николаевич Щербаков1; профессор кафедры инфекционных болезней и ветеринарно-санитарной экспертизы, доктор ветеринарных наук

scherbakov_pavel@mail.ru; https://orcid.org/0000-0001-8685-4645

Арина Олеговна Дерхо1; студент

arina_avrora@mail.ru; https://orcid.org/0000-0002-1914-8721

1Южно-Уральский государственный аграрный университет, ул. им. Ю.А. Гагарина 13, Троицк, 457100, Россия

2Федеральный научный центр пищевых систем им. В.М. Горбатова Российской академии наук, ул. им. Талалихина, 26, Москва, 109316, Россия

3Уральский государственный аграрный университет, ул. им. Карла Либкнехта, 42, Екатеринбург, 620075, Россия

УДК 619:616.98:578-084.37-097.3:636.4
DOI: 10.32634/0869-8155-2024-384-7-38-48

Просмотров: 347


Источник: https://agrarnayanauka.ru/immunometabolicheskie-osobennosti-formirovaniya-postvakczinalnogo-immuniteta-protiv-czvs-2-u-svinomatok/

Межтекстовые Отзывы
Посмотреть все комментарии
guest